其原理是:在PCR反應體系中加入過量熒光染料,DNA擴增的過程中,熒光染料特異性地摻入DNA雙鏈,發(fā)射熒光信號,隨著反應的進行,熒光強度逐漸增強,并且可以實時測量。如果你要擴增你的目標樣品40個循環(huán),在最后一個循環(huán)結(jié)束時檢測到的熒光會比在第10個循環(huán)測得的熒光強很多。
優(yōu)點:
1、成本較低,適合大規(guī)模的實驗。
2、在實驗設計階段非常省時,因為它只需要合適的引物設計。
缺點:
1、特異性不是很高。染料可以插入任何雙鏈DNA,包括引物二聚物和非特異性產(chǎn)物。
2、如果引物二聚體存在或者產(chǎn)物受到污染,得到的結(jié)果會不可靠。3、更容易與低豐度的目標產(chǎn)生非特異性熒光。
需要更多的時間進行結(jié)果分析。
這種方法涉及使用熒光標記的寡核苷酸(短DNA分子),探針通常在5 '端和3 '端都被標記。
在探針的5’端有報告基團,3’端設計淬滅基團,當報告基團接近淬滅基團時,不會檢測到熒光信號。RT-qPCR反應時,寡核苷酸兩個基團分離,即可檢測到熒光信號,并與PCR產(chǎn)物同步。
使用這種方法的熒光檢測依賴于兩個過程:1)引物與目標序列的結(jié)合(2)探針與引物下游
互補序列的結(jié)合。
優(yōu)點:
1、更有可能只放大所需的產(chǎn)物,由于引物和探針的結(jié)合具有特異性。
2、不需要解離曲線,只有探針與正確的目的序列結(jié)合時才能檢測到熒光。
3、由于具有特異性,數(shù)據(jù)更可靠。
4、數(shù)據(jù)分析時節(jié)省時間。
缺點:
1、需要大規(guī)模實驗時耗費成本高。
2、需要更長的時間來設計實驗,因為需要好的引物和探針。
總的來說,這兩種熒光檢測方法都很有效,但對于你的具體實驗,可以選擇適合的方法。
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