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禽流感病毒N6亞型實時熒光RT-PCR檢測試劑盒

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更新時間:2024-11-04 11:04:21瀏覽次數(shù):309

聯(lián)系我們時請說明是化工儀器網上看到的信息,謝謝!

產品簡介

供貨周期 一周 規(guī)格 10/50
禽流感病毒N6亞型實時熒光RT-PCR檢測試劑盒利用離心柱內硅基質膜提取 RNA,在反轉錄酶的作用下,以 RNA 為模板,以引物為起點合成與 RNA 模板互補的 cDNA 鏈。在 TaqDNA 聚合酶的作用下,經高溫變性、低溫退火、中溫延伸的循環(huán),使特異 DNA 段的拷貝數(shù)放大一倍

詳細介紹

用途 禽流感病毒N6亞型實時熒光RT-PCR檢測試劑盒采用實時熒光 RT-PCR 方法檢測禽組織、分泌物和排泄物中所有亞型的禽流感病
毒 H5 亞型(AIV-H5)的 RNA,適用于 AIV-H5 的檢測、診斷和流行病學調查。
原理 利用離心柱內硅基質膜提取樣品總 RNA,在高效反轉錄酶的作用下,以 RNA 為模板,以
引物為起點合成與 RNA 模板互補的 cDNA 鏈。在熱啟動 Taq 酶的作用下,經高溫變性、中溫退火
及延伸的循環(huán),使特異 DNA 片段的拷貝數(shù)放大一倍,經熒光素標記的探針與擴增的 DNA 雜交,利
用 Taq 聚合酶的 5'→3'外切活性,使熒光探針的報告基團與淬滅基團分離,發(fā)出特異性熒光信號,利
用熒光 PCR 儀檢測特異性熒光信號,根據(jù)樣品 Ct 值的大小及擴增曲線的形成情況判定結果。

試劑盒組成

保存期 本產品有效期為 12 個月。
需要自備的器材
1.儀器:分析天平、離心機、熒光 PCR 擴增儀、組織研磨器、-20 ℃冰箱、可調移液器(2 µL、20
µL、200 µL、1000 µL)。
2.耗材:熒光 PCR 反應管、眼科剪、眼科鑷、生理鹽水、1.5 mL 經焦碳酸二乙酯(DEPC)水
處理的滅菌離心管、吸頭(10 µL、200 µL、1000 µL)、滅菌雙蒸水。
使用注意事項
1.所有接觸病料的物品均應合理處置,以免污染實驗室。
2.PCR 整個試驗分配液區(qū)、模板提取區(qū)、擴增區(qū)。流程順序為配液區(qū)→模板提取區(qū)→擴增區(qū)。嚴
禁器材和試劑倒流。
3.所有試劑應在規(guī)定的溫度儲存。-20℃保存的各試劑管使用前應*融化,8000 rpm 離心 15 s,
使液體全部沉于管底,放于冰盒中,吸取液體時移液器吸頭盡量在液體表面層吸取,使用后立
即放回-20 ℃。
4.在 RNA 提取過程中,避免 RNA 酶污染,盡量縮短操作時間。
5.注意防止試劑盒組分受污染。不要使用超過有效期限的試劑,試劑盒之間的成分不要混用。
6.嚴格遵守操作說明可以獲得好的結果。操作過程中移液、定時等全部過程必須精確。
7.反應體系應在特定配液區(qū)或者超凈工作臺中配制,整個實驗過程嚴格控制污染。
8.反復凍融試劑將減低檢測靈敏度,本試劑盒應在 3 次內用完,請嚴格按試劑盒說明書操作。
樣品制備
1 樣品采集:病死或撲殺禽,取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織;待檢活禽,用棉拭子取呼吸
道分泌物或排泄物,置于 50%甘油生理鹽水中。2~8 ℃保存,送實驗室檢測。(要求送檢病料新鮮,
嚴禁反復凍融。)
2 樣品處理:每份樣品分別處理。
2.1 組織樣品處理:每份組織分別從三個不同的位置稱取樣品約 1g,用手術剪剪碎混勻后取 0.05 g
于研磨器中研磨,加入 1.5 mL 生理鹽水繼續(xù)研磨,待勻漿后轉至 1.5 mL 滅菌離心管中,8000 rpm
離心 2 min,取上清液 100 µL 于 1.5 mL 滅菌離心管中。
2.2 全血樣品處理:待血凝后取血清 100 µL,置 1.5 mL 滅菌離心管中。
2.3 陽性對照處理:取陽性對照 100 µL,置 1.5 mL 滅菌離心管中。
2.4 陰性對照處理:取陰性對照 100 µL,置 1.5 mL 滅菌離心管中。
禽流感病毒N6亞型實時熒光RT-PCR檢測試劑盒操作步驟
1 病毒 RNA 的提取
1.1 取已處理的樣品、陰性對照和陽性對照,分別加入裂解液 600 µL,充分顛倒混勻,室溫靜置 3~
5 min。
1.2 將液體吸入吸附柱中(吸附柱要套上收集管,吸取液體時盡量不要吸到懸浮雜質,以免離心時
堵塞吸附柱),13000 rpm 離心 30 s。
1.3 棄去收集管中液體,加入 600 µL 洗液,13000 rpm 離心 30 s。
1.4 重復步驟 1.3。
1.5 棄去收集管中液體,13000 rpm 空柱離心 2 min,以除去殘留的洗滌液。
1.6 將吸附柱移入新的 1.5 mL 離心管中,向柱中央加入洗脫液 50 µL,室溫靜置 1 min,13000 rpm
離心 30 s,離心管中液體即為模板 RNA。
2 實時熒光 RT-PCR 操作
 設被檢樣品、陰性對照和陽性對照總和為 N,則反應體系配制如下:
試劑 體系
無菌無核酸酶水 2.8(N+1)µL
RT-PCR 反應液 10(N+1)µL
酶混合液 0.4(N+1)µL
熒光探針 1.8(N+1)µL
 將以上配制的反應體系充分混勻后,分裝每個反應管中各 15 µL。
分別取 5 µL 模板 RNA,加入相應反應管中,混勻并作好標記,在熒光 PCR 儀上進行以下反應:
45 ℃ 15 min,95 ℃ 1min;95 ℃ 5 s,60 ℃ 35 s,在每個循環(huán)第二步(60℃ 35s)收集熒光信號,共
40 個循環(huán)。(報告基團“FAM”,淬滅基團“None”)。
結果判定
1 結果分析條件設定
閾值設定原則:閾值線設定于剛好超過陰性對照擴增曲線的最高點。不同儀器可根據(jù)儀器噪音
情況進行調整。
2 結果描述及判定
 陽性對照 Ct 值≤30 并出現(xiàn)特定的擴增曲線,陰性對照無 Ct 值并且無特定擴增曲線,實驗結果成立;被檢樣品 Ct 值≤30 并出現(xiàn)特定的擴增曲線為 AIV-H5 陽性;被檢樣品 30<Ct<37 并出現(xiàn)特定的擴增曲線,需重新取樣提取 RNA,擴增后進行結果判定,如仍是可疑,可判定為陽性;被檢樣品
Ct 值≥37 時,超過本方法檢測靈敏度范圍,判定為陰性;對于某些未呈現(xiàn) S 型曲線,但本底較高的樣品,應為陰性。

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