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目錄:北京易科泰生態(tài)技術(shù)有限公司>>植物類(lèi)>>植物冠層與光譜測(cè)量>> SM 9000光譜儀

SM 9000光譜儀
  • SM 9000光譜儀
參考價(jià) 面議
具體成交價(jià)以合同協(xié)議為準(zhǔn)
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  • 廠商性質(zhì) 代理商
  • 所在地 北京市
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更新時(shí)間:2018-01-24 13:29:25瀏覽次數(shù):2463評(píng)價(jià)

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SM9000光譜儀是一種高分辨率光纖光譜測(cè)量?jī)x,測(cè)量范圍涵蓋紫外光、可見(jiàn)光乃至近紅外波段。SM9000既可以單獨(dú)使用,也可以與FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)、FL3500雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x等儀器聯(lián)用,測(cè)量各種熒光的光譜組成。由于其具備超高的靈敏度,甚至可以測(cè)量單個(gè)細(xì)胞激發(fā)熒光的光譜。每秒可記錄100組16bits分辨率的光譜數(shù)據(jù)。

SM9000光譜儀是一種高分辨率光纖光譜測(cè)量?jī)x,測(cè)量范圍涵蓋紫外光、可見(jiàn)光乃至近紅外波段。SM9000既可以單獨(dú)使用,也可以與FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)、FL3500雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x等儀器聯(lián)用,測(cè)量各種熒光的光譜組成。由于其具備超高的靈敏度,甚至可以測(cè)量單個(gè)細(xì)胞激發(fā)熒光的光譜。每秒可記錄10016bits分辨率的光譜數(shù)據(jù)。

 

功能特點(diǎn):

  • 超高靈敏度,可檢測(cè)單個(gè)細(xì)胞的熒光光譜
  • 超高分辨率,可檢測(cè)10μs - 10ms的閃光
  • 采集頻率達(dá)100/秒,可檢測(cè)動(dòng)態(tài)光譜
  • 積分時(shí)間從1毫秒到數(shù)分鐘可調(diào)
  • 模塊化設(shè)計(jì),小巧耐用,熱穩(wěn)定性高
  • 產(chǎn)熱量極低

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技術(shù)參數(shù):

  • 光譜范圍:200 - 980nm
  • 分辨率:可檢測(cè)10μs - 10ms的閃光
  • 采集頻率:100/
  • 積分時(shí)間:1毫秒到數(shù)分鐘可調(diào)
  • 光學(xué)入口:直徑0.5,數(shù)值孔徑(NA=0.22,可拆卸SMA接頭
  • 入射狹縫:70µm×1400µm
  • 光柵:平場(chǎng)型校正
  • 波長(zhǎng)精確度:< 0.5nm
  • 再現(xiàn)性:< 0.1nm
  • 溫度漂移:< 0.01nm/K
  • 像素光譜距離:0.8nm
  • FWHM半高寬:3 - 4nm
  • 雜散光:0.1%(氙燈340nm測(cè)量)
  • CCD陣列像素?cái)?shù):1044×64
  • 像素尺寸:24×24mm2
  • 系統(tǒng)數(shù)據(jù):16Bit模數(shù)轉(zhuǎn)換
  • 可聯(lián)用儀器:FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)、FL3500雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x等

?FKM多光譜熒光動(dòng)態(tài)顯微成像系統(tǒng)聯(lián)用的SM9000

應(yīng)用案例:

FKM系統(tǒng)聯(lián)用研究銅指示植物海州香薷Elsholtzia splendens的葉綠素?zé)晒饧捌涔庾V組成(Peng,2013,Environ. Sci. Technol

FL3500系統(tǒng)聯(lián)用研究藍(lán)隱藻Guillardia theta的葉綠素?zé)晒饧捌涔庾V組成(Cheregi,2015,Journal of Experimental Botany

 

產(chǎn)地:歐洲

 參考文獻(xiàn):

  1. Bernát G, et al. 2017. On the origin of the slow M–T chlorophyll a luorescence decline in cyanobacteria: interplay of short-term light-responses. Photosynthesis Research, DOI 10.1007/s11120-017-0458-8
  2. Selyanin V, et al. 2016. The variability of light-harvesting complexes in aerobic anoxygenic phototrophs. Photosynthesis research, 128(1): 35-43
  3. Tilstone G, et al. 2016. Effect of CO2 enrichment on phytoplankton photosynthesis in the North Atlantic sub-tropical gyre. Progress in Oceanography, 158: 76-89
  4. Mishra K B, et al. 2016. Plant phenotyping: a perspective. Indian Journal of Plant Physiology, 21(4): 514-527
  5. Cheregi O, Kotabová E, Prášil O, et al. 2015. Presence of state transitions in the cryptophyte alga Guillardia theta . Journal of Experimental Botany, 66: 6461-6470
  6. Li G, Brown C M, Jeans J A, et al. 2015. The nitrogen costs of photosynthesis in a diatom under current and future pCO2. New Phytologist, 205:533-543
  7. Kotabová E, Jarešová J, Kaňa R, et al. 2014. Novel type of red-shifted chlorophyll a antenna complex from Chromera velia. I. Physiological relevance and functional connection to photosystems. Biochimica et Biophysica Acta – Bioenergetics, 1837:734-743
  8. Šebela D, Olejní?ková J, Sotolá? R, et al. 2014. The slow S to M fluorescence rise in cyanobacteria is due to a state 2 to state 1 transition. BBA , 1817: 1237-1247
  9. Peng H, et al. 2013. Toxicity and De?ciency of Copper in Elsholtzia splendens A?ect Photosynthesis Biophysics, Pigments and Metal Accumulation. Environ. Sci. Technol., 47 (12): 6120-6128

 

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